domingo, 28 de abril de 2013

medios de cultivo para el cultivo de anteras

INSTITUTO TECNOLÓGICO DE CD. ALTAMIRANO GRO.



LICENCIATURA EN  BIOLOGÍA

MATERIA:
BIOTECNOLOGÍA


UNIDAD III


TAREA: MEDIOS DE CULTIVO EMPLEADOS PARA EL CULTIVO DE ANTERAS

NOMBRE DEL ALUMNO:

LUIS ÁNGEL DAMASO ALVARADO



SEMESTRE Y GRUPO:
Vlll SEMESTRE “A”


NOMBRE DEL PROFESOR:
FRANCISCO JAVIER PUCHE ACOSTA





CULTIVO DE ANTERAS

El cultivo de anteras (CA)es una técnica por medio de la cual es posible producir líneas homocigotas a partir de poblaciones segregantes,mediante el doblamiento cromosómico del polen haploide y la regeneración de plantas en un ciclo de cultivo invitro.En contraste por los métodos estándar de fitomejoramiento normalmente se requieren seis generaciones de autofecundación para alcanzar la completa homocigosis en palntas autogamas.


DESARROLLO DEL CULTIVO DE ANTERAS
Se desarrolla en dos etapas principales :
* Inducción de microcallos
* Regeneración de plantaas
INDUCCION DE MICROCALLOS
En una primera face del C.A. se induce la formación de microcallos colocando las anteras en un medio cuya composición estimule selectivamente la división mitótica de las microspóras , a expensas de las células somaticas en el filamento, el tejido conectivo y la pared de la antera .El medio para inducir esa formación debe tener altas concentraciones de auxinas


El arroz, el estado de polen optimo para esa inducción es el comprendido entre el unicleado tardio y binucleado temprano .
A los 20 dias de cultivo se forma una masa diferenciada de tejido llamada microcallo, el cual contiene mas de 100 celulas por cada microspora involucrada en el proceso . el microcallo alcanza un tamaño de 2 mm alrededor de los 30 o 50 dias

Las anteras (órgano floral de las fanerógamas; se halla en la porción final de los estambres y contiene el polen en unas cavidades denominadas sacos polínicos.) contienen células sexuales masculinas haploides, el polen, los cuales cultivadas en un medio apropiado, pueden regenerar plantas también haploides. Aún cuando durante laevolución pudieron surgir especies haploides solamente entre organismos inferiores, puede ser conveniente durante varias etapas del proceso de mejora disponer de plantas haploides. Estas plantas, también llamadas haplontes, pueden ser obtenidas en diferentes especies, directamente a partir de las células del polen.

Ventajas de los haploides

  • Pueden manifestarse fenotípicamente alelos recesivos que en este estado no pueden ser encubiertos por los alelos dominantes, por esta razón las plantas haploides pueden constituir un material útil para realizar estudios genéticos y mutagénicos.
  • Cuando son diploidizados, se obtienen individuos totalmente homocigóticos, eso brinda la posibilidad de la obtención de plantas homocigóticas en una sola generación, a diferencia de los métodos tradicionales de autofecundación o selección, que requieren mucho tiempo para ello y aún así es imposible alcanzar la homocigosis total.
  • Constituyen un material que no induce poliploidía en experimentos de hibridación somática (fusión de protoplastos).

Las dos primeras posibilidades son aprovechadas en la mejora práctica a partir de 1964, donde se desarrolló por primera vez embriones directamente a partir de anteras, sin la intervención del proceso de fecundación. Desde entonces el número de especies en las que se ha podido obtener haploides mediante el cultivo de anteras se ha ampliado a unas 200. Es posible la obtención de haploides a partir de gametos femeninos en los ovarios, pero como el número de los gametos masculinos en las anteras es considerablemente mayor, se prefieren las anteras como material básico para la obtención de haploides.


Fines de los haploides diploidizado

  • La producción de líneas estrictamente homocigóticas.
  • La reducción considerable del proceso de obtención de dichas líneas.
  • La utilización de los individuos diploidizados como progenitores en programas de cruzamiento.

El más amplio empleo de los haploides lo constituye hasta el momento la obtención de líneas homocigóticas. Los híbridos heterocigóticos de la primera generación filial resultantes del cruzamiento de determinados progenitores segregan posteriormente en formas homocigóticas de forma espontánea en el caso de las plantas autógamas. Para el mejorador no es posible, aún en el caso de coeficientes de multiplicación muy altos, la obtención de poblaciones de más de un millón de individuos dentro de una generación, por lo cual se hace necesario racionalizar la vía para lograr una conveniente homocigotización para la creación de líneas altamente homocigóticas, como es el caso de la utilización de la haploidía. Con mucha menor frecuencia son utilizados hasta el momento los haploides para la obtención y selección de mutantes.
Medios de cultivo.
La técnica del cultivo de anteras en medio líquido desarrollada por investigadores chinos elevó enormemente el rendimiento de las plantas androgenéticas.

Medio 1: MS+1.1. mg/l de tiamina+ 1 mg/1 de ANA + 2 mg/l de cinetina + sucrosa al 3%.
Medio 2: 1000 mg/l de KNO3 + 100 mg/l (NH4)2SO4 + 200 mg/l de KH2PO4 + 35 mg/l de KCl + 1.1 mg/l de tiamina + 10 -4 M Fe-EDTA (MS) + 1 mg/l de ANA + 3 mg/l de cinetina + sacarosa al 3% + extracto de papa al 20%.

Fuentes

  • Allard, R. W.:Principios de la mejora genética de las plantas, Edición Revolucionaria, La Habana 1970.
  • Cornide,M.T.: Genética vegetal y fitomejoramiento, Editorial científico técnica, La Habana,1980.
  • FAO: Production yearbook, vol.24,FAO, Roma, 1970.






Obtención de plantas haploides en chile miahuateco (Capsicum annuum L.)

http://www.scielo.org.mx/img/revistas/remexca/v1n2/a6c2.jpg

http://www.scielo.org.mx/img/revistas/remexca/v1n2/a6c3.jpg





jueves, 21 de marzo de 2013

concentraciones de NaclO Y tiempos para desinfección

Material vegetal. Se emplearon segmentos uninodales desprovistos de hojas con una longitud aproximada de 20 mm, obtenidos de plantas donantes de ñame (D. alata L.) clon caraqueño cultivadas durante 35 días en condiciones semicontroladas (temperatura de 33 ± 2 °C, humedad relativa del 70-80%, e iluminación natural con fotoperiodo de 12 horas). Tratamientos de desinfección. Se utilizaron 150 segmentos uninodales por tratamiento los cuales se lavaron con detergente comercial al 1% durante 30 min, luego se enjuagaron tres veces con abundante agua. Seguidamente, y dentro de la cabina de flujo laminar, se sumergieron 1 min en alcohol al 70%, después se enjuagaron 3 veces con agua destilada estéril, y finalmente se sumergieron en distintas concentraciones de hipoclorito de sodio y tiempos de inmersión según las siguientes variantes de desinfección:
http://www.scielo.org.co/scielo.php?pid=S0123-34752009000200013&script=sci_arttext



Cuadro 1.  Influencia del hipoclorito de sodio sobre la desinfección de explantes de cuatro variedades de caña de azúcar
 CONCENTRACIONES DE HIPOCLORITO DE SODIO (tiempo de. Inmersión: 20 min.) 

T (0 %) 
1 %
4 %
8 %
10 %
20 %
Cantidad de explantes sembrados por variedad.
16 
16
16
16 
16 
16 
Cantidad de explantes contaminados por variedad.
16  
16 
10 
10
 8 
8  
Porcentaje de contaminación por variedad.
100    
100
62.5
62.5
50
50  
http://sian.inia.gob.ve/repositorio/revistas_ci/canadeazucar/cana0602/texto/metodos.htm



Meristemos
1%-1.2%
10 minutos
Hojas
2%
15 minutos
Semillas
1.2%
20 minutos
Segmentos nodales
5%
5 minutos


 Turrialba (revista interamericana de ciencias agrícolas), Instituto interamericano de ciencias agricolas,Inter-American Institute of Agricultural Science.


jueves, 28 de febrero de 2013

TEMPERATURA VS TIEMPO


INSTITUTO TECNOLÓGICO DE CD. ALTAMIRANO GRO.



LICENCIATURA EN  BIOLOGÍA

MATERIA:
BIOTECNOLOGÍA


UNIDAD II

CULTIVO DE TEJIDOS VEGETALES 
TAREA:
TIPOS DE ESTERILIZACIÓN (TIEMPOS, TEMPERATURA Y VOLÚMENES)
NOMBRE DEL ALUMNO:

LUIS ÁNGEL DAMASO ALVARADO



SEMESTRE Y GRUPO:
Vlll SEMESTRE “A”


NOMBRE DEL PROFESOR:
FRANCISCO JAVIER PUCHE ACOSTA


A)
La esterilización por calor seco se lleva a cabo en las estufas llamadas "Poupinel"(ya en desuso).
§ La esterilización por calor seco es el sistema de esterilización más antiguo.
§ Actualmente el calor seco solo se utiliza en algunas clínicas pequeñas normalmente odontológicas.
§ Aire seco calentado con mecheros o resistencias eléctricas.
§ Los objetos no precisan ser desmontados.
§ Produce deterioro del material que no podrá ser inflamable ni termosensible.
§ Retirar material con precaución por su alta temperatura.
La acción bactericida del calor seco, se debe a la oxidación física ó a una lenta coagulación de las proteínas bacterianas por acción del calor.

El calor seco en forma de aire caliente es difícil de controlar. La penetración en los materiales es lenta y casi igual y requiere largo periodo de exposición.
Materiales que pueden esterilizarse por calor seco:

Textiles, materiales no alterables por el calor, soluciones acuosas, todo lo que sea inflamable, complejos farmacológicos en polvo, compuestos grasos, parafinas, aceites, etc.

Temperatura      Tiempos 

      180º                 30´

      170º                 60´

      160º               120´

      150º           2h. 30´

      140º           3h.

      120º           Más de 6 horas.


Materiales: instrumental quirúrgico, vidrio, polvo de talco,...
Controles: físicos, químicos y biológicos (tiras de esporas).

Los materiales para la esterilización por calor seco no hace falta que sean porosos, pero sí que resistan altas temperaturas, durante prolongados periodos de tiempo.

El más útil y aconsejable, es el aluminio en bolsas; es seguro, resistente, económico. También puede emplearse poliamida especial.

La estufa de esterilización es el artefacto utilizado en los laboratorios para esterilizar por calor seco. Se requiere mayor temperatura y tiempo de exposición que el autoclave. La temperatura varía entre 120° y 180°C, requiriéndose distintos tiempos de exposición. A 140°C se necesitan por lo menos 5 horas de exposición, mientras que a 160°C se requieren al menos 2 horas de exposición.
Sirve para esterilizar material de vidrio. El papel y el algodón no pueden ser esterilizados a más de 160°C.
Ventajas
  • No es corrosivo para metales e instrumentos.
  • Permite la esterilización de sustancias en polvo y no acuosas, y de sustancias viscosas no volátiles.

Desventajas
  • Requiere mayor tiempo de esterilización, respecto al calor húmedo, debido a la baja penetración del calor.
Existen otras formas de eliminar microorganismos por calor seco. La incineración se utiliza para destruir material descartable contaminado. La acción directa de la llama elimina a los microorganismos cuando se lleva al rojo el material de metal como ansas, lancetas, agujas de disección.







Métodos de esterilización

La esterilización por vapor es el método más utilizado para las agujas de acupuntura y otros instrumentos de metal. No es tóxica y es económica, esporicida y rápida, si se utiliza de acuerdo con las instrucciones del fabricante (por ejemplo, tiempo, temperatura, presión, envoltura, tamaño de la carga y su localización). La esterilización por vapor sólo es plenamente eficaz si se realiza sin aire, a ser posible con saturación de vapor al 100%. La presión en sí no influye en la esterilización, pero sirve como medio para obtener las elevadas temperaturas que se necesitan.

También se puede utilizar calor seco para la esterilización de agujas, y en particular para la esterilización de materiales que podría dañar el calor húmedo, pero las agujas pueden convertirse en quebradizas. Requiere temperaturas más altas y tiempos de esterilización más largos.

En el cuadro que figura a continuación se indican las temperaturas y los tiempos de esterilización recomendados para el vapor a presión y el calor seco.

Métodos de esterilización recomendados
* Vapor a presión (por ejemplo, autoclave, esterilizador de presión)
Presión requerida: => 15 libras por pulgada cuadrada (101 kilopascales)
Temperatura
Tiempo
115 °C
30 minutos
121 °C
15 minutos
126 °C
10 minutos
134 °C
3 minutos
* Calor seco (por ejemplo, horno eléctrico)
Temperatura
Tiempo
160 °C
120 minutos
170 °C
60 minutos
180 °C
30 minutos

(Fuente: WHO - GPA/TCO/HCS/95/16, pág. 15.)





BIBLIOGRAFIA

http://www.emagister.com/curso-esterilizacion/esterilizacion-calor-seco
http://www.portalesmedicos.com/publicaciones/articles/914/6/Conceptos-basicos-sobre-esterilizacion-del-instrumental-quirurgico
http://apps.who.int/medicinedocs/es/d/Js4932s/5.2.html

B)
AUTOCLAVE El autoclave es un instrumento habitual en los laboratorios de cultivo in vitro . En esencia, un autoclave es un recipiente en el que se consigue exponer el material a esterilizar a temperaturas superiores a la de ebullición del agua, gracias a aumentar la presión. El proceso de esterilización suele efectuarse con calor húmedo que es el medio más confiable y conocido para la destrucción de todas las formas de vida microbial .





Vapor  saturado a presión superior a lo normal



Bajo estas condiciones se logran temperaturas superiores al punto de ebullición del agua. Generalmente se emplea la presión de vapor de  una atmósfera por encima de la presión normal, lo que corresponden a una temperatura de 121°C. El poder de penetración del vapor a esta temperatura es muy alto, lo suficiente como para destruir de 15 a 20 minutos dependiendo del volumen del material a Esterilizar, esporas que sebrevivirian a la  Ebullición durante horas. Por este método se pueden esterilizar soluciones, medios de cultivo, material de vidrio,ropa y materiales que soporten el proceso de esterilización. existen varios tipos de autoclaves siendo el más comúnmente usado el de Chamberland. El equipo consiste en una caldera metálica (en general de cobre) rodeada por una camisa externa también metálica de forma cilíndrica, en cuya parte inferior, y por debajo de la caldera, se encuentra la fuente de calor.


La caldera lleva en su interior un doble fondo desmontable y perforado sobre el cual se coloca el material a esterilizar. La parte superior cierra con una tapa de bronce que ajusta perfectamente mediante una junta de goma de siliconas y una serie de tornillos de bronce .La tapa presenta tres elementos que comunican con el interior de la caldera: el manómetro, que generalmente indica presión sobre la atmosférica, la válvula de seguridad, y la llave de salida de vapor o espita.

El tiempo de exposición varía con el volumen de los líquidos contenidos en distintos recipientes:
            RECIPIENTE
             VOLUMEN
            (Ml)
             TIEMPO DE EXPOSICIÓN
           (Min)
   Vaso de precipitado
         20
                               12-14
Erlenmeyer
         50
           12-14
Erlenmeyer
          200
            12-15
Erlenmeyer
          1000
            20-25
Erlenmeyer
          2000
            30-35

 los tiempos son validos  para un tratamiento a 121°C 
una vez transcurrido el tiempo de tratamiento, apagar la fuente de calor y esperar
que el manómetro marque cero.  Recién en ese momento se puede abrir la llave de 
salida de vapor y luego la tapa del autoclave para retirar el material.




El autoclave es el aparato más comúnmente utilizado en los laboratorios para esterilizar cultivos y soluciones que no formen emulsiones con el agua y que no se desnaturalicen a temperaturas mayores a 100 °C. Una temperatura de 121 °C (una atmósfera de sobrepresión) con un tiempo de exposición mayor a 15 minutos sirve para destruir organismos formadores de esporas.

Presión
[atm]
Temperatura
[°C]
Descarga completa del aire
Descarga de 2/3 del aire
Descarga de 1/2 del aire
Sin descarga del aire
1/3
109
100
90
72
2/3
115
109
100
90
1
121
115
109
100
4/3
126
121
115
109
5/3
130
126
121
115
2
133
130
126
121
Influencia de la descarga incompleta de aire en la temperatura del autoclave

Ventajas
  • Rápido calentamiento y penetración
  • Destrucción de bacterias y esporas en corto tiempo
  • No deja residuos tóxicos
  • Hay un bajo deterioro del material expuesto
  • Económico

Desventajas
  • No permite esterilizar soluciones que formen emulsiones con el agua
  • Es corrosivo sobre ciertos instrumentos metálicos


BIBLIOGRAFIA: 
http://www.slideshare.net/elcrack_10jm/exposicion-autoclave
http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar/Seminarioesterilizacion.htm